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WB实验全攻略:从样品处理到结果解读 ꠥꌦꤊ处理样品前的准备 将培养皿或培养瓶放在冰上,用冰冷的PBS缓冲液洗涤细胞。 吸干PBS,然后添加适量的冰冷细胞裂解缓冲液(每107细胞/100 mm培养皿/150 cm2培养瓶加入1 ml;每5㗱06细胞/60 mm培养皿/75 cm2培养瓶加入0.5 ml)。 用预冷的塑料细胞刮板刮下贴壁细胞,将悬浮细胞液轻柔地转移至预冷微量离心管中。 在4℃下持续搅拌30分钟。随后进行超声处理。以探头超声仪为例,设定功率为40W或总功率的40%,进行多次打3秒停3秒的超声处理,每次超声5-10次。超声后,裂解液将变得清澈且不再黏稠。加入Loading缓冲液后进行煮样。注意:跨膜蛋白不宜煮样,直接加入Loading缓冲液;(若使用水浴超声,则适当延长时间,超声30秒至2分钟,全程保持在冰浴环境中)。 若无超声仪,可使用带注射器的针头(20G-18G-16G)在冰上多次抽吸,直至裂解液变清澈。 解剖样品前的准备 使用干净的器械在冰上解剖目标组织。为防止蛋白酶的降解,最好在尽快完成解剖过程。 将解剖好的组织放入圆底离心管或Eppendorf管中,立即浸入液氮中进行“速冻”。将样本存储在-80Ⰳ中备用,或者立即放在冰上进行匀浆处理。对于约5 mg的组织,迅速向管中加入约300 裂解液,并使用电动匀浆器匀浆。使用2倍裂解液两次冲洗刀片,每次使用200 ,然后在4℃下(例如将回旋振荡器放入冰箱中)持续振摇2小时。裂解液的体积应根据组织总量来确定;蛋白提取物不宜过于稀释,以免造成蛋白丢失,同时尽量减少样本体积,以便于在凝胶上进行上样。最小浓度为0.1 mg/mL,最佳浓度为1-5 mg/mL。 在微型离心机中以4℃和12,000 rpm的速度离心20分钟。轻轻地从离心机中取出离心管放置在冰上。将上清液吸出并转移到新的预冷离心管中,将沉淀废弃。 实验注意事项 在进行WB实验时,每个步骤都需要仔细操作,以确保实验结果的准确性。希望这篇详细的实验方案能帮助你更好地理解和执行WB实验。
鋨銥溶液如何分离提取 Trizol法提取RNA的原理 Trizol是一种单相溶液,由苯酚和异硫氰酸胍等组成。它能破坏细胞并溶解细胞成分。通过加入氯仿,可以萃取出上层水相(含RNA)、界面层和下层的红色有机相(含DNA和蛋白)。 젥ꌦꤊ样品处理 组织:将组织在液氮中研磨,每50-100mg组织中加入1mlTrizol,用匀浆仪进行匀浆处理,样品体积不应超过Trizol体积的10%。 单层培养细胞:直接在培养板中加入Trizol裂解细胞,每10cmⲩ⧧ﯼ即3.5cm直径的培养板)加1ml,用移液枪吹打几次。 裂解细胞 对于贴壁细胞:吸弃培养基,用1mlPBS洗2次(PBS要避免37℃水浴,不能用冷的PBS)。 在6孔板中放冰上,每孔加入1mlTrizol,裂解细胞,吹打混匀至透明。 收集裂解液 将裂解液收集到1.5mlEP管中,裂解5-10min。此时可存于-80℃中。 每个样品中加入200ul氯仿,剧烈震荡15s,室温3min。 12000rpm离心15min。 沉淀RNA 在新的EP管中加入500ul异丙醇,1:1吸取等体积的上层RNA水相溶液,同一方向混匀,室温下静止10-20min。注意不要吸到下面中间层。 12000rpm,4℃离心10min。 弃除异丙醇,留下沉淀。 洗涤RNA 加入1ml75%乙醇,12000rpm,4℃离心3min,弃上清液。 重复上一步,室温干燥5min(RNA晾干,留一点点就可以了)。 溶解RNA 加入30-50ulDEPC水溶解,用NanoDrop2000测纯度(1.8-2.1正常)。分装,于-80℃冻存。 事项 过程中需佩戴口罩和新手套,对台面以及周围环境进行灭酶处理,尽量在超净台中进行操作。 使用无Rnase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。 溶液配制应使用无Rnase的水(将水加入到干净的玻璃瓶中,加入DEPC至终浓度为0.1%(V/V),放置过夜,高压灭菌)。 Trizol裂解液非常危险,需小心避免溅到身上,台面上的Trizol要及时清理干净。 ᠥ灩 RNA得率过低:使用更有效的破碎/匀浆方法,如液氮捣碎、酶消化破壁、电动匀浆器匀浆;更换抽提试剂;核酸浓度低时,采用低温沉淀,并延长沉淀时间;增加细胞数量。 RNA质量不高:取上层水相时求多,吸到了下层有机相;清洗不干净。
circRNA实验全解 实验原理 在组织或细胞中提取的total RNA通常包含多种RNA。为了准确分析circRNA,首先需要去除样本中的核糖体RNA和poly-A RNA干扰,然后用RNase酶消化掉线性RNA,从而使circRNA富集。 实验目的 从总RNA中富集circRNA,采用Northern blot和特异的PCR进行验证,并对circRNA的成环特性进行评估。 ꠥꌦ料 RNA提取试剂盒 核糖体RNA去除试剂盒 PolyA结合磁珠 RNAaseR试剂盒 放线菌素D Northern blot试剂盒 发散引物RT-PCR 实验步骤 4.1 RNA提取 样品处理 组织样品:加入400ul Trizol溶液到装有绿豆大小组织块的EP管中,利用电动组织匀浆器在冰上充分匀浆1-2min,后放置室温充分裂解10min。 细胞样品:12孔板细胞弃去上清,每孔加入600ul Trizol溶液。先在冰上裂解15-20min,再用1ml移液枪吹打液体充分裂解贴壁细胞,后将液体转移到RNasefree EP管中。 RNA提取 按1:5比例,在Trizol溶液中加入氯仿,手动充分摇匀混合液20-30s,室温放置10min。 4度1200g离心10min,小心转移上层透明液体到EP管中。 按异丙醇与Trizol溶液比例为1:2加入异丙醇,上下颠倒混匀液体,室温放置10-15min。 4度1200g离心10min,弃去上清,可见羽毛状RNA沉淀于管侧底部。按等比例加入75%乙醇,温和地悬浮RNA沉淀。 4度7500g离心5min,尽量吸除上清,室温晾干5-10min。用20ul RNase free dH20溶解RNA,测浓度后-80度保存。 总RNA定量 RNA在260nm波长处有最大吸收峰,可通过测定RNA样品的OD260和OD280估算出RNA的含量和纯度。OD260值为1相当于40ug/ml单链RNA,该方法提取的RNA OD260/280值在0.8-2之间。 circRNA的预处理 去除核糖体RNA和poly-A RNA 使用Invitrogen的核糖体RNA去除试剂盒RiboMinusTM Human/Mouse Transcriptome Isolation Kit(货号K1550-01)。 通过磁珠法结合Poly(A)的RNA后剩余的RNA即为Poly(A)-RNA样品。 RNAaseR酶消化 RNase R是一类核糖核酸外切酶,能降解大部分线性RNA,但circRNA不易被RNase R酶消化降解。因此可以通过该实验鉴别circRNA和线性RNA。 准备总RNA样品:提取细胞或组织的总RNA,测浓度后备用。 RNaseR反应体系:取5ug total RNA样品按下面体系准备消化。 短暂旋转试管,添加5xFirst-StrandBuffer, 0.1MDTT, RNasin和SuperScriptM RT,轻轻移液并将反应液在25℃下孵育5分钟。 在50℃下孵育60分钟,然后通过灭活反应在70℃加热15分钟。 发散引物可以扩增circRNA,而不能扩增线性RNA。 参考文献 Chen et al. (2015). Isolation of non-polyadenylated and ribosomal-free RNAs from mammalian cells. Methods Mol Biol 1206, 69-80. Yang et al. (2016). Characterization of Circular RNA. Methods Mol Biol 1402, 215-227.
铁死亡研究:铁离子浓度测定全攻略 样品准备 首先,用离心管精确称重并去皮,然后加入组织块再次称重。每50mg组织加入400裂解液。接着,用电动高速匀浆器或手动玻璃匀浆器将组织破碎。匀浆后,将其置于摇床上裂解2小时,然后以12000rpm离心5分钟,取上层清液备用(记得留一份BCA测蛋白浓度校正哦~)。 标准品稀释 在每个离心管中加入110uL稀释用液(后面要用100uL,所以多配一点点备用)。然后,从3mM母液中吸取12.2uL至300uM的离心管中,混匀后吸出110uL至75uM的管内,依此类推,配置成150uM、75uM、37.5uM、18.75uM、9.38uM、4.69uM的标准品。 砦𗷦配置 将缓冲液与4.5%的高锰酸钾溶液(0.225g高锰酸钾加入5ml纯水)按1:1混匀。 ꠥ𗥤𝜦 置 使用1.5ml离心管,设置空白对照管、标准品管和样品管。如果样品中的铁元素含量过高,用裂解液适当稀释后再进行测定。 工作液孵育 将工作液混匀,60℃孵育1小时。冷却至室温后离心,将管盖与管壁上的液滴沉入管底。 젩离子检测 加入30ul铁离子检测剂混匀,室温孵育30分钟。此步可能产生络合物沉淀,用移液器轻轻吹打即可溶解,若沉淀不溶,12000rpm离心5分钟,取上层清液即可。 检测 取200ul于96孔板,在550nm测定吸光度(如果不能测定550nm,也可以在540nm~580nm范围内检测)。 绘制标准曲线并计算铁离子浓度 最后,绘制标准曲线并计算铁离子浓度。记得用BCA校正浓度哦~ ⚠️ 注意事项 操作时尽量避免铁器的接触,所以我把塑料吸头套在了镊子上来取组织啦~
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